Rólunk

A Szentágothai János Kutatóközpont a PTE korszerű, nemzetközi tudományszervezési és menedzsment normák szerint kialakított új intézménye, amely az élettudományi, élettelen természettudományi, valamint környezettudományi oktatás...

Tovább

Bejelentkezés


Retinális neurobiológiai kutatócsoport

  • Kutatási koncepció
  • Munkatársak
  • Publikációk
  • Elnyert pályázatok
  • Szolgáltatások
  • Laboratóriumok, műszerek
  • Galériák

​​​​​​​1. Retinális szignalizáció munkacsoport: Dr. Gábriel Róbert egyetemi tanár, Kovács-Valasek Andrea 

Kutatásaink a metabolikus retinadegenerációk folyamatainak mélyebb megértését célozzák kísérletes állatmodellekben. Szeretnénk megtudni, hogy az egyes, emberi retinamegbetegedések hátterében álló metabolikus folymatok hogyan idézik elő a retinális sejtek pusztulását, melyek azok a biokémiai háttérmechanizmusok, amelyek meghúzódnak a látásromlás mögött. Ezek a vizsgálatok lehetővé teszik azt is, hogy különböző módokon megkíséreljük megakadályozni a retinadegeneráció lezajlását, megakadályozva a degenerációs útvonalak aktiválódását vagy előidézve az idegsejtek védelmi folyamatainak megerősítését. Ez utóbbi útvonalak megismerése lehetőséget ad arra, hogy gyógyszerjelölt molekulákat próbáljunk ki és fejlesszünk tovább. Kísérleteink során a retinális információ-feldolgozás, idegi degeneráció és neuroprotekció mechanizmusait is vizsgáljuk.

2. Retinális elektromos szinapszisok munkacsoport: Dr. Völgyi Béla, Dr. Rebolledo Antúnez Santiago, Dr. Kovács-Öller Tamás, Debertin Gábor, Ganczer Alma, Tengölics Ádám, Balogh Márton, Albert László

A környezetünkből származó információ ~85%-a a retinán keresztül éri el idegrendszerünket, ezért a retinális neuronhálózat működésének megértése esszenciális. Közel 40 éve ismert, hogy az elektromos szinapszisok ennek az idegi hálózatnak alapvető elemei, de ezeknek a képalkotásban betöltött nélkülözhetetlen szerepe csak a közelmúltban vált nyilvánvalóvá. Kutatócsoportunk célja az elektromosan kapcsolt retinális neuronhálózatok szerepének igazolása magasabb rendű látási funkciókban. Munkánkban az elektromos szinapszisokat alkotó fehérjék (connexin – Cx) eloszlásának változásait vizsgáljuk az egyedfejlődés során illetve különböző környezeti tényezők változásainak hatására. Munkánkban különös hangsúlyt kapnak a belső retina elektromos szinapszisai, melyek dúcsejtek és amakrin sejtek között (dúc-dúc, amakrin-amakrin, amakrin-dúc) jönnek létre és a dúcsejtek akcióspotenciál szinkronizációjában vesznek részt. Vizsgáljuk, hogy a dúcsejtek populációs aktivitása hogyan vesz részt az egyes képi mintázatok kódolásában. Szintén vizsgáljuk az elektromos- és kémiai szinaptikus jelátvitel egymásra hatását, esetleges együttműködését. A kutatás eredményei retinális implantátumok algoritmusainak elkészítéséhez és a robotikában alkalmazható bionikus szem létrehozásához szolgáltatnak információt.

Retinális szignalizáció munkacsoport:

Kiss P, Szabadfi K, Horvath G, Tamas A, Farkas J, Gabriel R, Reglodi D (2013) Gender-dependent effects of enriched environment and social isolation in ischemic retinal lesion in adult rats. Int. J. Mol. Sci. 14, 16111-16123. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23921682

Szabadfi K, Pintér E, Reglodi D, Gábriel R (2014) Neuropeptides, trophic factors and other substances providing morphofunctional and metabolic protection in experimental models of diabetic retinopathy. Int. Rev. Cell Mol. Biol. 331, 1-121. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24952915

Szabadfi K, Estrada C, Fernandez-Villalba E, Tarragon E, Setalo G, Izura V, Reglodi D, Tamas A, Gabriel R, Herrero MT (2015) Retinal aging in the diurnal Chilean rodent (Octodon degus): histological, ultrastructural and neurochemical alterations of the vertical information processing pathway. Front. Cell. Neurosci. 9, 126. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25954153

Yi F, Catudio-Garrett E, Gabriel R, Wilhelm M, Erdelyi F, Szabo G, Deisseroth K, Lawrence JJ (2015) Hippocampal “cholinergic interneurons” visualized with the choline acetyltransferase promoter: anatomical distribution, intrinsic membrane properties, neurochemical characteristics, and capacity for cholinergic modulation. Front. Synaptic Neurosci. 7, 4. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Yi+F%2C+Catudio-Garrett+E%2C+Gabriel+R%2C+Wilhelm+M%2C+Erdelyi+F%2C+Szabo+G%2C+Deisseroth+K%2C+Lawrence+JJ

Retinális elektromos szinapszisok munkacsoport:

Völgyi BKovács-Öller TAtlasz TWilhelm MGábriel R (2013) Gap junctional coupling in the vertebrate retina: variations on one theme? Prog Retin Eye Res. 34:1-18. doi: 10.1016/j.preteyeres.2012.12.002. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23313713

Völgyi B, Pan F, Paul DL, Wang JT, Huberman AD, Bloomfield SA (2013) Gap junctions are essential for generating the correlated spike activity of neighboring retinal ganglion cells. PLoS One 8(7):e69426. doi: 10.1371/journal.pone.0069426. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23936012

Völgyi BDebertin GBalogh MPopovich EKovács-Öller T (2014) Compartment-specific tyrosine hydroxylase-positive innervation to AII amacrine cells in the rabbit retina. Neuroscience 270:88-97. doi: 10.1016/j.neuroscience.2014.03.038. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24704514

Kántor O, Varga A, Kovács-Öller T, Énzsöly A, Balogh L, Baksa G, Szepessy Z, Fonta C, Roe AW, Nitschke R, Szél Á, Négyessy L, Völgyi B, Lukáts Á (2014) TNAP activity is localized at critical sites of retinal neurotransmission across various vertebrate species. Cell Tissue Res 358(1):85-98. doi: 10.1007/s00441-014-1944-3. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24988913.

Akopian A, Atlasz T, Pan F, Wong S, Zhang Y, Völgyi B, Paul DL, Bloomfield SA (2014) Gap junction-mediated death of retinal neurons is connexin and insult specific: a potential target for neuroprotection. J Neurosci 34(32):10582-91. doi: 10.1523/JNEUROSCI.1912-14.2014. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25100592

Kovács-Öller TRaics KOrbán JNyitrai MVölgyi B (2014) Developmental changes in the expression level of connexin36 in the rat retina. Cell Tissue Res 358:289-302. doi: 10.1007/s00441-014-1967-9. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25110193

Kántor O, Varga A, Tóth R, Énzsöly A, Pálfi E, Kovács-Öller T, Nitschke R, Szél Á, Székely A, Völgyi B, Négyessy L, Somogyvári Z, Lukáts Á (2015) Stratified organization and disorganization of inner plexiform layer revealed by TNAP activity in healthy and diabetic rat retina. Cell Tissue Res 359(2):409-21. doi: 10.1007/s00441-014-2047-x. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25411053

Debertin G, Kántor O, Kovács-Öller T, Balogh L, Szabó-Meleg EOrbán JNyitrai MVölgyi B (2015) Tyrosine Hydroxylase Positive Perisomatic Rings are Formed around Various Amacrine Cell Types in the Mammalian Retina. J Neurochem. in press. doi: 10.1111/jnc.13144. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25940543

Kántor O, Cserpán D, Völgyi B, Lukáts Á, Somogyvári Z. The Retinal TNAP. Subcell Biochem. 2015;76:107-23. doi: 10.1007/978-94-017-7197-9_6. Review.

Kántor O, Benkő Z, Énzsöly A, Dávid C, Naumann A, Nitschke R, Szabó A, Pálfi E, Orbán J, Nyitrai M, Németh J, Szél Á, Lukáts Á, Völgyi B. Characterization of connexin36 gap junctions in the human outer retina. Brain Struct Funct. 2016 Jul;221(6):2963-84. doi: 10.1007/s00429-015-1082-z.

Kántor O, Mezey S, Adeghate J, Naumann A, Nitschke R, Énzsöly A, Szabó A, Lukáts Á, Németh J, Somogyvári Z, Völgyi B. Calcium buffer proteins are specific markers of human retinal neurons. Cell Tissue Res. 2016 Jul;365(1):29-50. doi: 10.1007/s00441-016-2376-z.

Pan F, Toychiev A, Zhang Y, Atlasz T, Ramakrishnan H, Roy K, Völgyi B, Akopian A, Bloomfield SA. Inhibitory masking controls the threshold sensitivity of retinal ganglion cells. J Physiol. 2016 Nov 15;594(22):6679-6699. doi: 10.1113/JP272267.

Dr. Gábriel Róbert: NKFIH119289, Nemzeti Agykutatási Program KTIA_NAP_13-A-I/12

Dr. Völgyi Béla: OTKA K105247; Nemzeti Kíválóság Program, Szent-Györgyi Albert Tapasztalt Kutatói Ösztöndíj TÁMOP-4.2.4.A/ 2-11/1-2012-0001; Nemzeti Agykutatói Program KTIA_NAP_13-2-2015-0008.

Kovács-Öller Tamás: Nemzeti Kíválóság Program, Apáczai Csere János Doktoranduszi Ösztöndíj TÁMOP-4.2.4.A/ 2-11/1-2012-0001.

  • Transzmitterek és receptoraik szövettani, molekuláris biológiai, elektronmikroszkópos és elektrofiziológiai vizsgálata
  • Apoptózis mechanizmusok szövettani és molekuláris biológiai vizsgálata
  • Képalkotási mérések (Ca++ -imaging)
  • Extracelluláris elektrofiziológiai elvezetések
  • Sokcsatornás extracelluláris elektrofiziológiai elvezetések
  • Patch-clamp elektrofiziológiai elvezetések
  • Molekuláris neurobiológiai labor (Western-blot, RT-PCR, qPCR)
  • Szövettani labor (Mikrotómok fény- és elektronmikroszkópos munkákhoz, preparáló mikroszkópok, digitális fotomikroszkóp,
  • Elektrofiziológia labor (3 fiziológiai mérőhely; erősítők (patch-clamp, extracelluláris AC, multielektródás MEA, elektródahúzó, elektróda pozícionáló, rezgésmentes asztal, analóg-digitális konverter, jelszinkronizátor)
  • Ca-imaging labor (2 TILL photonics rendszer alapú mérőhely, Polychrome 5 fényforrások, Retiga2000 kamera, Andor895 kamera, Nikon CCD kamera)

Retinális neurobiológiai kutatócsoport